实验动物是研究疾病发生/防治机制、新型药物的基础,包括实验兔子、实验猴子、实验猪、实验青蛙、实验鼠等。其中,实验鼠是继人类之后第二种完成全基因组测序的哺乳动物,其基因组中拥有人类99%蛋白编码基因的同源基因,是目前应用较广阔的实验动物,具有繁殖数量多、发育快、性成熟早、妊娠期短、饲养成本低、实验重复性高、对外来刺激敏感、遗传信息清晰等优点。实验鼠在医学领域应用十分广阔,可用于微生物学领域,研究吸血虫、锥虫、支原体、沙门氏菌等微生物寄生虫致病原理;可用于免疫学领域,研究免疫缺陷机理和相关药物;可用放射学领域,研究放射线照射剂量和辐射效应;可用于药物筛选领域,筛选药物对疾病的作用,获得每种药物治疗效果;可用于安全测试领域,判断新产品安全性;可用于遗传学领域,研究遗传病基因结构和功能,构建人类遗传病动物模型;可用于老年学领域,探究抗老老药物效果。常州卡文斯实验鼠饲养环境恒温恒湿,减少环境应激影响。II型糖尿病大鼠

在动物实验中,为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化,常需将药物注入动物体内。给药的途径和方法是多种多样的,可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。实验动物常见的给用用药物使用方法法法式有:口服、静脉注射、腹腔注射、皮下注射、肌肉注射、椎管内注射、脑室内注射、皮内注射、淋巴腔注射、鼻腔和舌下给药等多种。灌胃法小鼠灌胃方法比较简单,需要关注的只有两点:一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线,方便灌胃针头进入,二是动作要轻柔,从口角进入,防止损失食道。操作步骤:1.抓住小鼠,使其头、颈和身体呈一直线。2.用1ml的注射器配灌胃针头。灌胃针头从小鼠的嘴角进入,压住舌头,抵住上颚,轻轻向内推进,进入食管后会有一个刺空感,进入食道后就可以推注药液。3.灌胃容积一般是0.1~0.2ml/10g,比较大0.35ml/10g,每只小鼠的灌胃最大容积不超过0.8ml。Wistar-Kyoto小鼠繁殖育种卡文斯实验鼠以稳定的遗传背景和高效的疾病模型著称。

实验鼠是指经人工培育,对其携带的微生物和寄生虫实行控制,遗传背景明确或者来源清楚,用于科学研究、教学、生产、检定以及其他科学实验的老鼠。实验鼠包括大鼠、小鼠、地鼠、豚鼠等,具有成熟早、繁殖能力强、对外来刺激敏感等特点。实验鼠是继人类之后第二种完成全基因组测序的哺乳动物,其基因组与人类高度同源,生理生化及生长发育的调控机理和人类基本一致,同时具有繁殖能力强、世代周期短、饲养成本低等特点,是目前应用较为广阔的实验动物之一,其他实验动物还包括实验猴子、实验兔子、实验猪等。随着基因工程技术的发展,特别是近年来以CRISPR/Cas9为首的基因编辑技术的普遍运用,使得大规模生产实验鼠成为可能,从而可以更加精细地模拟人类特定生理病理特征,在阐明生命机理规律、疾病诊断诊治完成完成疗程以及新药创制研发等方面具有不可替代的作用。
ICR小鼠主要用途:已选为某些生物制品检定的法规动物。广阔用于药理、毒理、**、放射性、食品、生物制品等的科研、生产和教学。中国科学院遗传研究所在1973年从日本国立**研究所引进;1979中国医学科学院分院动物中心引进;1978年北京检定所引进;1983年上海计划生育研究所从瑞士苏黎世毒理学研究所引进。特点:远交系小鼠,毛色白化。适应性强,体格健壮,繁殖力强,生长速度快,实验重复性较好,雌鼠自发性畸胎瘤和管状腺瘤发病率为0%~1%,用氨基甲酸乙酯诱发时,11~16天胚胎期畸胎瘤和管状腺瘤发病率为5.9%,离乳个体管状腺瘤和囊瘤发生率为30%,孕鼠为3%。是国际通用的封闭群小鼠,我国从美国、日本、英国、瑞士等国引进的ICR,各群体之间在遗传特性方面不可避免地出现了一些差异,在应用时应注意。ICR/JCL小鼠是进行免疫药物筛选,复制病理模型较常用的实验动物。外周血象和骨髓细胞,具有较好的稳定性,是良好的血液学实验用动物。在社交互动实验中,抑郁模型实验小鼠与同伴的互动时间较正常组减少 60%。

品系名称:Wistar-Kyoto品系简称:WKY品系类别:近交系大鼠品系毛色:白色产品状态:活物品系描述:1971年NIH从Kyoto医学院引入的Wistar种群中得到该品系,为超出平常血压大鼠的对照品系,雄鼠动脉收缩压为18.6-20kpa,雌鼠为17.3kpa。WKY大鼠的特点:(1)忧郁、焦虑等行为异常;(2)内分泌异常,容易应激与Wistar大鼠相比,对应激刺激具有高反应性,可能与下丘脑-垂体-肾上腺轴和下丘脑-垂体-甲状腺轴异常调节有关;(3)代谢异常。应用领域:用作超出平常血压对照、多动症(ADHD)模型对照、抑郁症模型。长期睡眠剥夺的实验小鼠,其记忆力测试成绩较正常睡眠组明显降低。肌萎缩侧索硬化小鼠周龄
常州卡文斯提供定制化实验鼠模型,助力医学研究。II型糖尿病大鼠
小鼠的抓取固定1.小鼠的抓取(1)右手提起小鼠尾巴,将其放在鼠笼盖或其他粗糙表面上(2)小鼠向前挣扎爬行时,再用左手拇指和食指抓住鼠耳和颈部皮肤抓取固定时需注意:过分用力,会使动物窒息或颈椎脱臼;用力过小,动物头部能反转来咬伤实验者的手。因此实验者必须反复练习,熟练掌握。2.小鼠的固定(1)徒手固定用右手抓取鼠尾提起,置于鼠笼或实验台向后拉,在其向前爬行时,用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤,将鼠体置于左手心中,把后肢拉直,以无名指按住鼠尾,小指按住后腿即可。固定板固定鼠麻醉后置小鼠固定板上,取仰卧位,用胶布缠粘四肢,再用针透过胶布扎在板上,从而将小鼠固定在小鼠固定板上。(3)固定架固定让小鼠直接钻入固定架里,封好固定架的封口,露出尾巴。此装置特别适用于小鼠尾静脉注射等。II型糖尿病大鼠