鼠基本参数
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鼠企业商机

在动物实验中,为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化,常需将药物注入动物体内。给药的途径和方法是多种多样的,可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。实验动物常见的给用用药物使用方法法法式有:口服、静脉注射、腹腔注射、皮下注射、肌肉注射、椎管内注射、脑室内注射、皮内注射、淋巴腔注射、鼻腔和舌下给药等多种。灌胃法小鼠灌胃方法比较简单,需要关注的只有两点:一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线,方便灌胃针头进入,二是动作要轻柔,从口角进入,防止损失食道。操作步骤:1.抓住小鼠,使其头、颈和身体呈一直线。2.用1ml的注射器配灌胃针头。灌胃针头从小鼠的嘴角进入,压住舌头,抵住上颚,轻轻向内推进,进入食管后会有一个刺空感,进入食道后就可以推注药液。3.灌胃容积一般是0.1~0.2ml/10g,比较大0.35ml/10g,每只小鼠的灌胃最大容积不超过0.8ml。在社交互动实验中,抑郁模型实验小鼠与同伴的互动时间较正常组减少 60%。NOD-Scid小鼠饲养管理

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实验鼠是目前应用较为广阔的一种实验动物,在探寻基因基础功能、疾病发病机制和药物临床前筛选等方面有着十分重要的作用。然而在实验鼠(比如SD大鼠、C57小鼠)手术造模或术后给药观察的过程中,经常发现实验鼠啃咬或舔舐皮肤上的缝线、敷料、药物或伤口,导致实验无法进行,这是让实验人员非常头疼的问题。收集了下网友遇到的问题比如:大鼠术后伤口被抓挠舔舐?缝线被咬破?小鼠皮炎或创面的敷料难固定?烫伤后伤口包扎被咬掉?小鼠舔舐背部创口或药物?小鼠创面应用水凝胶用皮钉固定依旧被啃掉?小鼠对药膏味道敏感一直舔食?大鼠术后啃咬伤口缝线(包括腹部、背部)?大小鼠背部皮肤给药后一直抓挠舔舐?NOD-Scid小鼠卡文斯实验鼠的饲养环境全程监控,确保动物健康与实验数据准确性。

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实验鼠是指经人工培育,对其携带的微生物和寄生虫实行控制,遗传背景明确或者来源清楚,用于科学研究、教学、生产、检定以及其他科学实验的老鼠。实验鼠包括大鼠、小鼠、地鼠、豚鼠等,具有成熟早、繁殖能力强、对外来刺激敏感等特点。实验鼠是继人类之后第二种完成全基因组测序的哺乳动物,其基因组与人类高度同源,生理生化及生长发育的调控机理和人类基本一致,同时具有繁殖能力强、世代周期短、饲养成本低等特点,是目前应用较为广阔的实验动物之一,其他实验动物还包括实验猴子、实验兔子、实验猪等。随着基因工程技术的发展,特别是近年来以CRISPR/Cas9为首的基因编辑技术的普遍运用,使得大规模生产实验鼠成为可能,从而可以更加精细地模拟人类特定生理病理特征,在阐明生命机理规律、疾病诊断诊治完成完成疗程以及新药创制研发等方面具有不可替代的作用。

卡文斯有专业的小鼠代理繁育团队,丰富的项目经验拥有10年以上SPF级动物饲养与管理经验,为国内外闻名院校、医院等提供服务,客户遍布全国各地区专业的技术团队,保障动物质量专业的项目管理体系,实时跟进小鼠繁育进程,定期项目数据反馈业务优势:严格的饲养条件温度20-26°C相对湿度40-70%噪音≤60dB氨浓度15次/小时昼夜明暗交替12h/12h严格的饲养管理要求饮用水高压灭菌后的酸化水的酸化水,PH值在、垫料及饮水的更换频率至少每周一次,所有的脏笼具,水瓶浸泡井通过高压水枪清洗后,均经高压灭菌后方可进入屏障设施,其他不能进行高压灭菌的物品则通过严格的消毒流程进入。动物的日常检查生长情况的日常观察及异常情况反馈多面的质量监测检测内容检测手段检测周期小鼠(哨兵鼠)病原委外/自检每季度1次/每月1次小鼠饲料无菌检测委外/自检每批次小鼠饮水无菌检测委外/自检每季度1次/每月1次小鼠垫料无菌检测委外/自检每季度1次/每月1次消毒效果验证。基于CRISPR/Cas9技术,卡文斯实验鼠配套提供病理检测、基因型鉴定等增值服务。

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小鼠特性体型小,发育成熟时体重:雄性20~40g,雌性18~40g;面部尖突,长有19根长长的触须,耳耸立呈半圆形、眼大、鼻尖,尾长与体长约相等。尾部表皮覆有小角质鳞片。(大约200片鳞片)毛色因品系品种而异常见有:白色、野灰色、黑色、棕色、黄色、巧克力色和肉桂色等。近年来,基因工程技术不断实现突破,以CRISPR/Cas9为首的基因编辑技术得到了普遍运用,使实验鼠大规模生产成为可能,快速推动了实验鼠行业发展进程。与发达国家相比,我国实验鼠市场起步较晚,还处于发展早期,随着国内实验鼠企业培育技术逐渐成熟、产品种类愈加丰富,市场国产化率正在提升。卡文斯实验鼠配套提供病理检测、基因型鉴定等增值服务。Rag2小鼠供货时间

常州卡文斯提供基因编辑实验鼠定制服务,助力前沿生物医学研究。NOD-Scid小鼠饲养管理

大鼠的抓取固定大鼠的抓取斯基本同小鼠,只不过大鼠比小鼠牙尖性猛,不易用袭击方式抓取,否则会被咬伤手指,抓取时为避免咬伤,可带上帆布手套。如果进行腹腔、肌肉皮下等注射和灌胃时,同样可采用左手固定法,只是用拇指和食指捏住鼠耳,余下三指紧捏鼠背皮肤,置于左掌心中,这样右手即可进行各种实验操作。也可伸开左手之虎口,敏捷地从后,一把抓住。若做手术或解剖等,则需事先麻醉或处死,然后用细棉线绳活缚腿,背卧位绑在大鼠固定板上;尾静脉注射时的固定同小鼠(只需将固定架改为大鼠固定盒即可)。注意事项:为了减少或避免大鼠在实验中发生的应激反应,以减少对实验者的攻击损伤,这里介绍几种抓取大鼠的技巧改进:(1)在抓取前可用一条清洁的毛巾蒙住大鼠全身,大鼠处于黑暗状态下神经会有所放松,看不到实验者的动作也会降低对实验者的攻击机会;(2)一般抓取大鼠都会抓住尾巴,但是有时大鼠尾巴不在身后而在其面前,这时实验者可能在抓取鼠尾的时候被大鼠攻击。这种情况一般可以轻推其腰臀部,使之变换姿势,待鼠尾调整到身后再进行抓取;(3)由于大鼠尾部被抓起时,会应激性地排便、排尿,所以比较好在粗糙表面上垫上报纸等,做好防范措施,减轻工作量。NOD-Scid小鼠饲养管理

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