外泌体 超声法

外泌体起源于多泡体,以细胞管腔内囊泡的形式存在.细胞的胞吞形成带有外源性抗体的内体小泡,在高尔基体等细胞器的作用下形成早期核内体,早期核内体的囊膜内陷、突入形成多个小囊泡,并选择性的接受细胞内的蛋白质、核酸、脂类等成分,较终形成晚期核内体,晚期核内体与细胞膜融合,并将外泌体排出胞外。这是一个连续而又复杂的过程,从内体小泡到成熟外泌体,需要在各细胞器间传递并包装,包括:TSG101、Alix蛋白、CD63、CD81、神经酰胺、胆固醇等。外泌体的排出跟其他胞内小泡大致相同,受到Rab家族蛋白的调控,敲除细胞的Rab27a和Rab27b蛋白后,外泌体不能排出,且从高尔基体到晚期核内体的囊泡运输不受影响。外泌体能向病变细胞输送功能性物质，所以有很大潜力作为基因和药物递送的载体。外泌体 超声法

外泌体可以调控星状细胞（HSC）活化，并参与HSC细胞迁移的进程。活化的HSC来源的外泌体中，CCN2表达升高，Twist1和miR-214表达被抑制，这些外泌体还能诱导静止的HSC细胞表达CCN2。此外，Twist1可以诱导miR-214表达从而抑制CCN2的表达。CCL4处理的外泌体和外泌体SK1/S1P会诱导HSC迁移。MSC分泌的外泌体可以有效减缓肝纤维化过程，这可能成为肝纤维化治理的靶点。研究显示，CP-MSC来源的外泌体miR-125b可以抑制Hedgehog信号通路的活化，抑制纤维化；而HUC-MSC分泌的外泌体可以逆转细胞形态和TGF-β1诱导的EMT进程，减弱肝纤维化。细胞外泌体通用技术要求下载实际上，用PS亲和法提取的人白血病细胞释放的外泌体。

流式细胞技术针对外泌体的表面抗原标记物进行检测，能够实现外泌体的高通量、多通道分析。但是由于外泌体的粒径小、折射率低，所以采用常规的流式细胞仪进行检测时往往需要将外泌体与beads连接以增大表面积、增强反射，操作耗时又费力。Tian等搭建了一种高灵敏度的流式细胞仪(HSFCM)，将可检测的外泌体粒径降至40nm，能够在不连接beads的情况下实现每分钟10000个外泌体的检测，并且能够结合免疫荧光的方法进行外泌体标志蛋白质的定量检测，目前该仪器已商品化。

外泌体（Exosome）开始被认为是毫无作用的“垃圾”，但随着研究的不断深入，人们发现事实并非如此，外泌体（Exosome）是具有功能活性并可进行细胞间信息传递的微囊泡。外泌体（Exosome）介导瘤细胞的免疫耐受。瘤细胞来源的外泌体（Exosome）本身可作为瘤抗原，因此，瘤来源的外泌体（Exosome）既是一种抗原呈递系统，同时也是瘤排斥抗原的来源。瘤来源的外泌体（Exosome）能够通过传递某些抑制信号，在机体免疫应答过程中起负性调节作用，诱导瘤细胞形成免疫耐受，从而逃避免疫细胞的杀伤。外泌体观察到它们可以在体内刺激免疫应答。

外泌体即细胞分泌的直径约40-100nm的微小膜泡，多种细胞在正常及病理状态下均可分泌外泌体。一开始被当做细胞排泄物，但是近几年，研究发现外泌体可谓是小身体大作用。种瘤发生转移后，如何靶向呈递药物一直是种瘤医治中的一个巨大挑战。发表于NanoLett的一项研究中，研究人员利用外泌体制备药物的递送系统（LD-MDS），并取得成功。在这项研究中，研究人员将相关药物锚定在活巨噬细胞膜上，细胞自身相关蛋白酶响应开启并将药物转载进入外泌体，顺利递送至肺转移灶并且转化为纳米囊泡和次级纳米囊泡，促进转移性4T1病细胞的有效内化和细胞死亡。之后，受损的4T1病细胞可以释放次级纳米囊泡和游离药物分子，再破坏邻近的病细胞。研究显示，LD-MDS对体内直径小于100μm的肺转移病灶显示出优异的靶向效率，并显着压制肺转移。利用外泌体将siRNA和抗药剂等运输到目标细胞中。细胞外泌体通用技术要求下载

外泌体是各种细胞外泌的直径在30-100nm之间的膜囊泡。外泌体 超声法

要使外泌体在临床上得以更加广fan的应用，仍然需要更加深入的研究:(1)外泌体的提纯方式主要是超速离心，这种提纯方式效率较低，耗费时间长并且相对昂贵，并不适宜在临床上应用。(2)外泌体虽然具有一定的靶向性，但这种靶向性较弱，不足以解决中流的靶向zhiliao问题。通过在外泌体表面表达特异性肽的方法可以为上述问题的解决提供较为有效的途径。(3)在外泌体的载药fang式方面，现在常用的电穿孔法虽更具优势，但往往会对外泌体或药物的完整性产生影响，转染外泌体法不能保证基因类药物全部进入外泌体内而不是粘附在外泌体表面，存在着安全隐患。(4)外泌体作为细胞分泌物质，其本身可调性并不如脂质体以及聚合物基药物载体。外泌体 超声法