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5胃炎实验动物模型

5.1萎缩性胃炎动物模型【操作步骤】SD或Wistar大鼠均可,收集同种同系大鼠的胃黏膜,去除食物残渣,用生理盐水洗净,快速混合均匀,置4℃冰箱放置1h后,3000转/分,离心15min,取上清液,测定蛋白浓度,调整浓度为200mg/ml作为抗原,与等量的弗氏完全佐剂乳化,注入大鼠大腿皮下,2次/周,隔周注射,剂量为10mg蛋白/次,观察萎缩性胃炎的发生。【结果分析】该方法造成大鼠胃黏膜的免疫损伤导致胃黏膜萎缩,制模成功率高、重复性好、病理结果可靠。

5.2化学物质诱发的急性胃炎大鼠模型【操作步骤】成年Wistar或SD大鼠,术前禁食24h。以20mmol/L的阿司匹林或水杨酸溶液按100mg/kg体重灌胃。或以10mmol/L的醋酸、不同浓度的盐酸(1、10、100mmol/L)、2mmol/L的牛磺胆酸、l5%的乙醇等单独或几种合用灌胃。在4h后取材见胃内发生急性弥漫性炎症变化。5.3幽门螺杆菌***的动物模型1.幽门螺杆菌***的悉生乳猪动物模型

【操作步骤】将从胃溃疡病人中分离到的幽门螺杆菌(Hp)1000000个经口接种于剖腹产净化的乳猪,3d后再接种1000000个细菌。

【结果分析】所有实验乳猪上消化道中都可分离出Hp,而回肠末端、结肠和粪便中均为阴性。 哪家公司实验动物模型成功率比较高?湖北好的实验动物模型制作

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实验动物模型中,抑郁模型的制作包括以下几种不同的应激因子。1.昼夜节律的重新调整和光照性质的改变(闪光刺激、昼夜颠倒、间断光照);2.食物和饮水供应的调整(禁食、禁水、空瓶放置);3.居住环境的改变(单笼饲养、交换合笼饲养对象、鼠笼倾斜、潮湿垫料);4.短时间内电击足底;5.强迫游泳;6.束缚应激;7.高温环境;8.噪音干扰;9.陌生气味;10.陌生异常物品(塑料杯、木勺、碎布片);注意:将几种不同的应激因子在实验全程中使用、顺序随机,同种刺激不能连续出现,使动物不能预料刺激的发生。英瀚斯生物,靠谱的实验外包服务商。宁夏常见实验动物模型价格实验动物模型后续检测。

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阿尔茨海默病的实验动物模型之化学损伤动物模型。主要是以向模型鼠脑部、皮下或腹腔注射特定物质来建立模型,如通过立体定位仪、微透析等方法向实验动物脑内海马、基底核、侧脑室等不同部位注入Aβ 片段,鹅蒿蕈氨酸(IBO)、STZ 等物质。或通过皮下或腹腔注射 D-半乳糖、三氯化铝、冈田酸(OKA)和东莨菪碱(SCOP)等致损物质。

Aβ 诱导模型,Aβ诱导模型是通过在海马CA1区或者侧脑室多次注射Aβ片段诱发Aβ沉积、形成SP为主要病理特点的AD动物模型。Aβ诱导的AD动物模型脑内Aβ沉积明显、Aβ斑块周围星形胶质细胞增生,行为呆滞,易卧,学习记忆能力衰退,出现认知功能障碍、体能衰减明显等AD病理表现。Aβ诱导动物模型,影响因素单一,模型形成时间长,造模过程中,有对脑组织造成穿透性损伤的不确定性,另外,由于注射部位过于集中,使Aβ沉积部位与AD患者Aβ在脑内多区域分布有所不同。

阿尔茨海默病实验动物模型。目前常用研究AD的实验动物有非人灵长类动物与啮齿类动物,在选择时遵循“减少、替代、优化”的3R原则。非人灵长类动物与人类的脑部解剖结构、神经病变特点以及生物行为模式相似,尤其是恒河猴,在其脑中观察到含有Aβ沉积的老年斑和神经原纤维缠结现象,无论是自发还是诱发模型,都能够较好的复制AD相关的病理及生理特征,但是昂贵的费用与稀少的资源限制了非人灵长类动物的大量应用。啮齿类动物虽然在病变模拟方面不如非人灵长类全方面的,但是具有价格低廉、资源范围很广的、生存率高等特点,与人类的脑部解剖结构与生理特征也较为相近,更适于诱导模型的大量制备,成为AD应用更范围很广的的动物模型。许多AD小鼠模型的背景品系是C57BL/6J小鼠,然而这种品系的小鼠似乎对类似AD的神经病理学具有特别的抵抗力。英瀚斯生物,可做实验动物模型行为学分析。

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蛛网膜下腔出血系由脑底或脑表部位的血管破裂,血液破入蛛网膜下腔引起。颅内动脉瘤,脑动、静脉畸形,血压高动脉硬化等为常见病因。蛛网膜下腔出血后可引起脑血管痉挛。因此,蛛网膜下腔出血和迟发性脑血管痉挛的模型有许多共同之处,造模时可同时作为参考。

英瀚斯熟练掌握蛛网膜下腔出血造模,及其他动物模型。

复制方法 :健康大鼠,雌雄不拘,体重为250~350g。将钓鱼线剪成长约50mm,并在18mm处作标记,酒精消毒后置于无菌生理盐水中备用。麻醉后仰卧固定,剃除颈部毛发,手术区域皮肤消毒。颈正中切口,分离右侧颈总动脉、颈外动脉、颈内动脉,结扎、切断颈外动脉分支及颈总动脉分叉处小动脉,并游离颈外动脉主干,沿着颈内动脉暴露翼腭动脉,在颈外动脉残端放一丝线,使其呈一松结。在翼腭动脉起始部置一微动脉夹,同时夹闭颈总动脉及颈内动脉主干近端。在颈外动脉残端剪一小口,将制备好的栓线插入。此时将颈外动脉残端处丝线的松结拉紧,除去颈内动脉的动脉夹,继续将丝线沿着颈内动脉插入,直至感到有阻力,这时稍用力再插入1.0~1.5mm后有落空感即可抽出丝线并除去微动脉夹。栓线的直径及插入的深度根据动物的体重而定。 实验动物模型的常见问题解答。青海大鼠实验动物模型推荐

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实验动物模型的灌注取材方法:

小鼠灌注灌流

固定小鼠时我一般采用输液器的针头(4号半,这样肉眼可见就是肺部明显充气胀大变白,针头要从心轴方向进针,刺入心尖3~4毫米左右就可以了,开始灌流后剪破右心耳,约40毫升生理盐水,后再灌流约20毫升多聚甲醛,整个灌流固定的过程就完成了。

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大鼠灌注

按大鼠体重,用2%戊巴,比妥钠(0.25ml/100g)进行腹腔注射麻醉,开胸暴露心脏,向左心室内注射1%肝素钠0.2ml后经左心室行主动脉插管,血管钳固定后剪开右心耳,先以生理盐水150ml快速冲洗血管,然后用4%多聚甲醛的0.01mol/LPBS(4℃,PH7.40)250ml灌注固定,先快后慢,共需时间为50min,之后取材,置4%多聚甲醛固定液后固定,在4℃冰箱内保存。多聚甲醛进入大鼠体内,大鼠会出现四肢、尾的抽搐,**终以肝脏发白、内脏鼓起即灌注好。 湖北好的实验动物模型制作

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