免疫组化的抗体选择
抗体是免疫组化实验成功的关键因素之一。选择合适的一抗需要考虑其特异性、灵敏度和适用性。特异性是指抗体只与目标蛋白结合,而不与其他蛋白发生交叉反应。灵敏度是指抗体能够检测低丰度的目标蛋白。适用性是指抗体适用于免疫组化实验,而不是其他实验(如Western blot)。此外,免疫组化实验中还需要考虑抗体的宿主物种、克隆性和浓度。免疫组化二抗的选择则需要考虑其与一抗的匹配性,以及是否带有显色或荧光标记。 免疫组化的那些小知识,都在这里!新疆免疫组化检测

免疫组化实验注意事项总结:
Ø本实验室所用切片一般是石蜡切片。
Ø烘片:使蜡片水分蒸发,石蜡软化,组织切片牢固贴在玻片上;烘片至跟烘片前透明度有差异。
Ø抗原修复时,使片子始终浸没在修复液中,液体不能干。
Ø一抗孵育在37度培养箱,湿盒放置1h,省时间和结合效果好,不要超过1h,容易过染。
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Ø二抗使用:两个二抗放大信号或一个二抗;若抗体信号强,可不用放大信号,尽量增大信噪比。
Ø10XDAB在常温溶解,尽可能现用现配,放于4度储存时间久了效果不佳。
Ø复水和脱水时所用的梯度酒精不可混用,要区分开。
Ø加抗体和显色液时,都要将片子甩干,在半干半湿的状态下再加,不然容易造成溶液的二次稀释。
Ø整个操作过程中在显色之前,一定不能干片。 陕西组织免疫组化哪家好在南京英瀚斯做的免疫组化,效果不错!

免疫组化的发展路程?在临床病理诊断中,免疫组织化学(IHC)是一种很重要的技术和手段,从20世纪70年代开始,免疫组化技术就应用于病理诊断,对于诊断cancer、cancer分类、判断预后产生了巨大的影响,同时也扩展了人们对于各种疾病及cancer形成过程的认识,提高了病理诊断与研究水平。但是,随着免疫组化的广泛应用,发现免疫组化技术存在一些局限性。深入研究免疫组化原理和技术,必须熟悉各种抗体真阳性反应部位,实现实验室间免疫组化标准化,使免疫组化在病理诊断中发挥比较大的辅助作用。如果您有免疫组化相关的实验,可以与我们英瀚斯生物进行联系。
免疫组化结果中的假阴性是指所有抗体标记的切片均呈阴性,无阳性信号,假阴性结果不是真实的反应。导致假阴性结果的原因有:(1)抗原修复方法选择不当,根据不同的抗原特点采用不同的修复方法,大多数抗体要求热修复,热修复又包括高压修复、微波修复及煮沸热修复;而对某些细胞内抗原和细胞间质抗原需要用酶消化,如表皮生长因子(EGFR)要求胃蛋白酶(Pepsin)消化,而Vimentin则不用修复;(2)一抗本身的问题:一抗效价降低或失效。在免疫组化中染色结果的假阴性会导致错诊或漏诊,进而影响临床诊断及延误医疗。解决这一问题的可通过设立阳性对照,比较两者染色结果。若阳性对照有表达,表明试剂和染色体系及实验步骤均无问题;若阳性对照无表达,则检测过程中某一试剂或某个步骤存在问题,应逐一查找原因。免疫组化实验原理,操作步骤尽在英瀚斯实验外包。

免疫组化中IHC vs ICC的区别。英瀚斯生物为您说明。除了生物学来源,IHC和ICC在样品处理的程度上也有所不同。ICC需要透化,要么通过固定过程,要么是单独的透化步骤,这样抗体才能与细胞内的靶点相结合。而IHC可能不要单独的透化步骤,这取决于切片的厚度和固定方法。包埋在石蜡中的IHC切片必须进一步处理,才能进行抗体染色。一旦处理好样品,IHC和ICC的染色操作就几乎没什么差异了。当然,就染色而言,根据所使用的抗体来优化还是少不了的。免疫组化样本如何处理?河南靠谱免疫组化实验
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免疫组化染色呈阴性结果的原因有哪些?
1、抗体浓度和质量问题以及抗体来源选择错误。不是抗体浓度越高就越易出现阳性结果,抗原抗体反应有前带和后带效应,必须摸索比较好浓度。
2、抗原修复不全,对于甲醛固定的组织必须用充分抗原修复来打开抗原表位,以利于与抗体结合;建议微波修复用高火4次*6min试试。有人做过实验,这是比较好的时间和次数。若不行,还可高压修复。
3、组织切片本身这种抗原含量低。
4、血清封闭时间过长。
5、DAB孵育时间过短。
6、细胞通透不全,抗体未能充分进入胞内参与反应。
7、开始做免疫组化,建议一定要首先做个阳性对照片,排除抗体等问题。 新疆免疫组化检测