芜湖济南细胞高效转染试剂

细胞转染的常用方法：细菌转染：原理：对于用脂质体不能实现转染的细胞，可以采用细菌转染。可用于蛋白质过表达或克制，是临床研究中较常用的方法。它通过侵染宿主细胞将外源基因整合到染色体中，可用于难转染细胞、原代细胞的稳定性转染。实验步骤：通过基因克隆生成重组细菌 → 采用非细菌法转染包装细胞系，扩增并分离得到重组细菌颗粒→纯化并滴定细菌液→转导目的细胞（含有细菌特异性的受体）→去除培养物中的细菌，并加入新鲜培养基→分析细胞瞬时基因表达或沉默情况。可以使用一些营养丰富的无血清培养基，或者在转染培养基中使用血清。芜湖济南细胞高效转染试剂

细胞转染效率低下的几个大坑：1. 细胞污染细胞污染也是造成细胞死亡，转染效率低下的一大原因。首先，转染细胞用的质粒必须保证无菌。而现在市场上的一般的质粒提取试剂盒都做不到较全无菌。毛博这里再贡献一个独门绝招：将提完质粒后或者提的较后一步，用75％乙醇沉淀，这样就除菌了。2.质粒不行转染用的质粒首先要保证数量，一般为2 μg以上。质粒纯度不够或者含有细菌LPS或其他对细胞有毒害作用的物质，也会影响转染效率。这个时候，就应该对质粒进行纯化和浓缩。无锡正规细胞高效转染试剂生产厂家细胞中瞬时转染的外源基因表达时间有限，通常*持续几天。

细胞转染，你至少要掌握以下几点：胞转染是指将外源分子如DNA，RNA等导入真核细胞的技术。随着分子生物学和细胞生物学研究的不断发展，转染已经成为研究和控制真核细胞基因功能的常规工具。在研究基因功能、调控基因表达、突变分析和蛋白质生产等生物学试验中，其应用越来越普遍。可分为瞬时转染，稳定转染等。瞬时转染是指外源 DNA/RNA 不整合到宿主染色体中，因此一个宿主细胞可存在多个拷贝数，产生高水平的表达，但通常只持续几天，多用于启动子和其他调控元件的分析。一般来说，超螺旋质粒 DNA 转染效率较高，在转染后 24-72 h 内分析结果，常常用到一些报告系统如荧光蛋白，β半乳糖苷酶等来帮助检测。稳定转染是指外源 DNA 既可以整合到宿主染色体中，也可能作为一种游离体存在。尽管线性 DNA 比超螺旋 DNA 转入量低但整合率高。外源 DNA 整合到染色体中概率很小，通常需要一些选择性标记反复筛选得到稳定转染的同源细胞系。

细胞转染之PEI 转染法：1.细胞分盘：通过胰酶消化收集细胞，用适当的完全培养基以 1×105 至 4×105细胞/cm2 的密度平铺细胞于 35 mm 培养皿上（根据实验需要选择培养皿，使细胞贴壁后所占面积达到培养皿总面积的 70－90％）。将细胞置于含 5％CO2 的 37℃温箱中孵育 8-24 h，当细胞贴壁完全后即可开始转染。转染前 2 h 换液（用 1.5 ml 无血清培养基置换旧的培养基）。注：PEI转染法对细胞生长有克制作用，在换液前细胞几乎不生长，所以需要密度比较大时做转染。2.制备PEI-DNA 混合物以 35 mm 组织培养皿用 240 μl 反应总体积为例。先在无菌EP管中加入120 μl 1×HBS,再加入质粒 DNA（总量 1-3 μg 为佳），混匀后加入等体积 PEI工作液，充分混匀后室温静置 20-30 min ，较后将这 240 μl 的PEI-DNA混合液逐滴加入上述单层细胞的细胞培养基中，轻轻摇动平皿混匀后置于含 5％ CO2的 37℃温箱孵育。对于转染相同量的DNA所需的较佳阳离子脂质体试剂的量会因细胞密度而异。

细胞转染操作方法：转染 ，是将外源性基因导入细胞内的一种专门技术。随着基因与蛋白功能研究的深入，转染目前已成为实验室工作中经常涉及的基本方法。转染大致可分为物理介导、化学介导和生物介导三类途径。电穿孔法、显微注射和基因属于通过物理方法将基因导入细胞的范例；化学介导方法很多，如经典的磷酸钙共沉淀法、脂质体转染方法、和多种阳离子物质介导的技术；生物介导方法，有较为原始的原生质体转染，和现在比较多见的各种细菌介导的转染技术。理想细胞转染方法，应该具有转染效率高、细胞毒性小等优点。细菌介导的转染技术，是目前转染效率较高的方法，同时具有细胞毒性很低的优势。但是，细菌转染方法的准备程序复杂，常常对细胞类型有很强的选择性，在一般实验室中很难普及。其它物理和化学介导的转染方法，则各有其特点。大部分外源DNA会被核酸酶降解或随细胞分裂而稀释。郑州正规细胞高效转染试剂服务电话

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细胞转染效率低下的几个大坑：1.准备不足做脂质体转染的时候，在开展正式实验前要多做预试验，优化转染条件。优化转染条件包括：脂质体的用量、DNA密度、细胞密度、脂质体和DNA混合孵育时间等等。2.电压过大做电转的时候，如果电压太大，往往会发生细胞大量死亡的情况。不同的细胞，需要的电压是不一样的。这就要求我们多做预实验，多摸索条件。对于大多数细胞来说，其较佳电压位于250-1250v/cm。另外，就是进行转染的细胞应该处于对数生长期。处于对数生长期的细胞的抗损伤能力是较强的。细胞浓度应该处于5x106到1x107／mL之间。每次转染的质粒应该控制在4-6 μg，如果﹥10μg，转染效率也较大降低。电击后，应该将DNA和细胞混合液在室温下放置10分钟，使细胞恢复损伤。芜湖济南细胞高效转染试剂