一些品种的小白鼠非常经典，它们的“科研生涯”可追溯到数百代前的祖先，造成了大家对实验鼠的刻板印象。其实，各种毛色的老鼠都在为科学献身。甚至，随着研究深入，科学家对实验鼠的要求走向多样化、精细化。从一开始的杂交、近交培育，到随机诱导基因突变，再到现在的精细基因编辑，百变实验鼠，为了人类的科学事业，承担了许多本不属于它们的人类疾病。全球生物研究处于快速发展阶段，包括实验鼠在内的实验动物行业是生物研发的关键平台，但是目前相关品系开发及配套设施仍然落后于市场需求，无论是生命科学研究还是新药开发，在此方面仍然面临无鼠可用的局面。实验鼠能够契合市场需求，具有良好的市场前景。江苏卡文斯作为常州区域实验鼠行业重点企业欢迎各位领导莅临！卡文斯实验鼠的微生物检测报告确保无特定病原体传染。ob/ob小鼠
小鼠特性体型小，发育成熟时体重：雄性20~40g，雌性18~40g；面部尖突，长有19根长长的触须，耳耸立呈半圆形、眼大、鼻尖，尾长与体长约相等。尾部表皮覆有小角质鳞片。（大约200片鳞片）毛色因品系品种而异常见有：白色、野灰色、黑色、棕色、黄色、巧克力色和肉桂色等。近年来，基因工程技术不断实现突破，以CRISPR/Cas9为首的基因编辑技术得到了普遍运用，使实验鼠大规模生产成为可能，快速推动了实验鼠行业发展进程。与发达国家相比，我国实验鼠市场起步较晚，还处于发展早期，随着国内实验鼠企业培育技术逐渐成熟、产品种类愈加丰富，市场国产化率正在提升。DIO小鼠应用常州卡文斯实验鼠在神经科学领域的研究中表现优异。
实验鼠是指经人工培育，对其携带的微生物和寄生虫实行控制，遗传背景明确或者来源清楚，用于科学研究、教学、生产、检定以及其他科学实验的老鼠。实验鼠包括大鼠、小鼠、地鼠、豚鼠等，具有成熟早、繁殖能力强、对外来刺激敏感等特点。实验鼠是继人类之后第二种完成全基因组测序的哺乳动物，其基因组与人类高度同源，生理生化及生长发育的调控机理和人类基本一致，同时具有繁殖能力强、世代周期短、饲养成本低等特点，是目前应用较为广阔的实验动物之一，其他实验动物还包括实验猴子、实验兔子、实验猪等。随着基因工程技术的发展，特别是近年来以CRISPR/Cas9为首的基因编辑技术的普遍运用，使得大规模生产实验鼠成为可能，从而可以更加精细地模拟人类特定生理病理特征，在阐明生命机理规律、疾病诊断诊治完成完成疗程以及新药创制研发等方面具有不可替代的作用。
ICR小鼠主要用途：已选为某些生物制品检定的法规动物。广阔用于药理、毒理、**、放射性、食品、生物制品等的科研、生产和教学。中国科学院遗传研究所在1973年从日本国立**研究所引进；1979中国医学科学院分院动物中心引进；1978年北京检定所引进；1983年上海计划生育研究所从瑞士苏黎世毒理学研究所引进。特点：远交系小鼠，毛色白化。适应性强，体格健壮，繁殖力强，生长速度快，实验重复性较好，雌鼠自发性畸胎瘤和管状腺瘤发病率为0%~1%，用氨基甲酸乙酯诱发时，11~16天胚胎期畸胎瘤和管状腺瘤发病率为5.9%，离乳个体管状腺瘤和囊瘤发生率为30%,孕鼠为3%。是国际通用的封闭群小鼠,我国从美国、日本、英国、瑞士等国引进的ICR，各群体之间在遗传特性方面不可避免地出现了一些差异，在应用时应注意。ICR/JCL小鼠是进行免疫药物筛选，复制病理模型较常用的实验动物。外周血象和骨髓细胞，具有较好的稳定性，是良好的血液学实验用动物。常州卡文斯严格执行实验动物伦理审查，确保科研合规性。
转基因小鼠（TG）模型是通过人工操作将外源基因整合到小鼠的基因组中，使其在遗传上发生改变，并表达新的基因，从而获得转基因小鼠。应用方式如下：借助显微注射技术将外源基因随机整合到小鼠基因组中，以获得过表达或条件性过表达某些基因的基因工程小鼠模型db基因为4号染色体隐性突变基因，能导致肥胖伴糖尿病，纯合子有过超高出寻常的血糖症;其瘦素受体基因失去功能，纯合的糖尿病自发突变小凰在出生后2周内就发生高胰岛素血症，血浆胰岛素开始升高，在3-4周龄时产生可以辨认的肥胖表型，4-8周血糖升高，同时胰岛素分泌增加至正常值的数倍，但组织中的胰岛素受体明显少于正常，并且受体的结合力也低于正常，8周后就发展为非常严重的过超高出寻常的血糖症，期间伴有胰岛素抵抗，B细胞功能衰竭，，一般在8~10个月内死亡，临床症状和病程比ob/ob更严重，寿命更短;纯合小多食、多饮、多尿，且纯合db/db小不育应用领域:更广地应用于糖尿病、肥胖症、伤口完成疗程延迟、丘脑/垂体后叶缺陷、胰脏损伤、生育障碍及免疫和炎症研究。常州卡文斯实验鼠的饲料营养均衡，严格符合国际实验动物饲养标准。肌萎缩侧索硬化小鼠繁殖育种
常州卡文斯实验鼠广泛应用于药物研发、基因编辑等领域。ob/ob小鼠
腹腔注射操作步骤：1.抓取小鼠一般都是放在饲养笼上，提其尾巴中部，水平偏下往后轻拉，小鼠爪子会自然会抓住笼子，此时应该迅速抓住小鼠的颈背部的皮毛，比较好是抓在小鼠的耳朵处，这样可以更好固定小鼠的头部，以防被咬。但是，切记力气不要过大，容易使小鼠窒息。再将小鼠的尾巴用左手无名指或小拇指固定，这样就可以将小鼠整个躯干固定好，注意一定要让小鼠处于一个舒服的身身体部位置，如果小鼠躯干不能保持竖直，很容易扎到脏器，引起出血，影响实验。2.注射抓取小鼠后，应腹部向上，头呈低位。头呈低位可以使得脏器移至低位，避免扎伤。右手持注射器，插入小鼠腹部，注射部位为小鼠后肢根部连线处任一侧1.5cm处，缓慢以45度左右进针，进针深度小于1cm，进针的感受为局部皮肤凹陷消失和落空感。3.拔针：为了防止漏液，轻微旋转针头，再缓缓拔出。在实验前，准备酒精棉球，注射器在使用后要消毒才能给下一只小鼠使用，避免交叉染上。此外，注射前，也可以用酒精棉球擦拭小鼠皮肤，可以明显辨别药物是否注射到腹腔，如果看到鼓包，就是注射到皮下了。ob/ob小鼠
